Определение чувствительности к препарату Ридостин

Бактериофаги – уникальные микроорганизмы. Их антибактериальная активность достигается внедрением в клетку возбудителя, последующим размножением и распадом бактерии.

Для лечения бактериальных заболеваний могут применяться либо антибиотики, либо бактериофаги, либо проводят совместную терапию.

В каких случаях необходимо назначать антибиотики, а когда – бактериофаги? Все ответы в нашей статье.

Зачем делать анализ

Одна из ключевых проблем, послужившая развитию антибиотикорезистентности бактерий, – неправильное применение антибиотиков или противомикробных препаратов.

Когда к врачу обращается пациент с острым течением заболевания, антибиотики в большинстве случаев назначают сразу, без предварительного определения чувствительности возбудителя.

Специалист назначает антибиотик исходя из собственного опыта, учитывая рекомендации по активности препарата в отношении бактерий, наиболее часто вызывающих данное заболевание.

Выбор антибиотика зачастую продиктован клинической ситуацией: необходимо устранить острые симптомы воспаления, что возможно только при ликвидации микроорганизма как причины, его вызывающей.

Одновременно с назначением антибиотика врач направляет на анализ по определению чувствительности возбудителя к антибактериальным препаратам и бактериофагам. Результаты анализа обычно готовы в течение 3–4-х дней.

Если врач по каким-либо причинам не назначил анализ на чувствительность к антибиотикам и бактериофагам, вы можете сделать его по своему желанию в клинической лаборатории, где проводят такие тесты.

Определение чувствительности к препарату Ридостин

Важные требования к подбору антибактериального препарата на первом этапе: правильная дозировка, узкий спектр активности. Корректное назначение антибиотика определяет возможность формирования к нему устойчивости у бактерий. К сожалению, часто случается наоборот: некорректно назначенный препарат катализирует процесс мутаций у бактерий и формирует устойчивость их к антибиотикам.

Резистентность к противомикробным средствам – серьезная проблема, представляющая угрозу для здоровья людей во всех регионах нашей планеты. Однако появление микроорганизмов, стойких к антибиотикам, послужило толчком к активному изучению бактериофагов.

Препараты бактериофагов рассматривают как альтернативу антибиотикам.

В отличие от антибактериальных препаратов бактериофаги воздействуют только на возбудителя заболевания, не затрагивая нормальную флору человеческого организма.

Препараты бактериофагов можно принимать в сочетании с другими антибактериальными средствами, что усиливает противобактериальный эффект и позволяет снизить дозу антибиотика.

Совместное назначение бактериофагов с противовирусными препаратами противопоказано.

Чтобы достичь нужного эффекта при лечении любым антибактериальным препаратом и препаратом бактериофага, необходимо пройти тест на чувствительность возбудителя.

Принцип определения чувствительности бактерий к антибиотикам и бактериофагам одинаковый. На первом этапе работают с бактериями, выделенными из патологического содержимого – раны, мочи, мазка со слизистой. Далее в питательную среду добавляют антибиотики разных групп и бактерии.

Антибиотикограмму – перечень антибактериальных препаратов, к которым чувствителен выделенный возбудитель, получают с помощью современных стандартизованных методов: серийных разведений или диффузионных методов (диско-диффузионных и Е-тестов).

Определение чувствительности к препарату Ридостин

Метод серийных разведений

Антибиотик в различных разведениях помещают в жидкую питательную среду (бульон) или агар, куда добавляют бактериальную суспензию. По наличию или отсутствию роста микроорганизмов в питательной среде оценивают эффективность антибиотика, определяют его минимальную подавляющую концентрацию. Определение чувствительности к препарату Ридостин

Диско-диффузионный метод

В питательную среду с ранее внесенной бактериальной суспензией помещают бумажные диски с антибиотиками. Вследствие диффузии антибиотика происходит подавление роста микроорганизмов, и по диаметру зон задержки роста судят о чувствительности культуры. Определение чувствительности к препарату Ридостин

Е-тест

Это полоска, на которую нанесен градиент концентрации антибиотика. Исследование проводят аналогично диско-диффузионному методу. Определение чувствительности к препарату Ридостин

Метод слепого пятна

Классический тест на определение чувствительности к бактериофагам. В клинических лабораториях и на производстве применяют метод титрования. Выделенные из патологического содержимого бактерии засевают в питательную среду вместе с бактериофагом. Определение чувствительности к препарату Ридостин

Появление стерильных округлых пятен говорит о лизисе (растворении клеток) бактерий с образованием колоний бактериофагов. Просветление среды (формирование прозрачных зон) подтверждает чувствительность бактерий к бактериофагу.

По спектру действия выделяют моновалентные бактериофаги, которые лизируют бактерии одного вида, и поливалентные – разрушающие бактерии нескольких видов.

Определение чувствительности к препарату Ридостин

На бланке теста будут обозначения в виде букв R или S. R (Resistant) – резистентность бактерий к данному бактериофагу или антибиотику, S (Sensitive) – чувствительность возбудителя к препарату.

Если результат теста R, лечение данным фаговым препаратом неэффективно, S говорит о том, что бактериофаг или антибиотик можно назначать. Если возбудитель чувствителен к определенной группе антибиотиков и резистентен к бактериофагу, назначают антибактериальные препараты, и наоборот.

Тест на антибиотико- и фагочувствительность помогает определить, справится препарат с возбудителем инфекции или нет. Это важный показатель, на который ориентируются специалисты при выборе схемы лечения.

АО «НПО «Микроген» выпускает широкий спектр бактериофагов, что расширяет возможности фаготерапии и позволяет корректно подобрать препарат, к которому чувствительны патогенные бактерии.

Оценка видового состава изолятов Сandida species, выделенных из различных биотопов, и их чувствительности к антифунгальным препаратам

В статье представлены результаты исследования, посвященного оценке видового состава изолятов Сandida species, выделенных из различных биотопов, и определению их чувствительности к антифунгальным препаратам.

Проблема грибковых инфекций остается актуальной на протяжении многих десятилетий.

Применение антибиотиков, зачастую необоснованное, иммунодефицитные состояния, возникающие в условиях интенсивных урбанистических нагрузок, применение пероральных контрацептивов, нарушение обмена веществ и функции эндокринной системы приводят к развитию предпосылок для формирования оптимальных условий для размножения грибковой флоры.

Грибы рода Candida (Candida spp.), входящие в состав микрофлоры организма человека, под действием неблагоприятных факторов, ослабляющих иммунную систему, становятся причиной воспалительного процесса. При этом повышаются адгезивные свойства грибов, которые прикрепляются к клеткам эпителия слизистых оболочек и колонизируют их.

Чаще кандидозное поражение затрагивает только поверхностные слои слизистых, реже эпителиальный барьер преодолевается грибковыми клетками, и происходит инвазия возбудителя в подлежащие ткани, иногда сопровождающаяся гематогенной диссеминацией [1]. В связи с этим клинические проявления инфекции, вызванной грибами Candida spp.

, разнообразны: от локального поражения слизистых оболочек до тяжелых форм инвазивного кандидоза с полиорганным поражением.

Среди поверхностных форм кандидозной инфекции лидирующие позиции занимает поражение слизистой оболочки влагалища и вульвы — вульвовагинозный кандидоз (ВВК). В последние десятилетия увеличивается число пациенток с часто рецидивирующим течением данного заболевания, при котором требуется длительный прием противогрибковых препаратов. По данным Н.Н. Климко и соавт.

[2], хронический рецидивирующий кандидозный вульвовагинит (ХРКВ), характеризующийся частыми (не менее 4 в течение года) рецидивами, является самым распространенным микотическим заболеванием среди женщин в России: более 2 млн российских женщин страдают ХРКВ, что составляет 2900 случаев на 100 тыс. населения. Персистирование Candida spp.

на слизистыхоболочкахприводит к возможности формирования резистентности к лекарственным препаратам и селекции устойчивых штаммов и, как следствие, к проблеме при выборе терапии ВВК, увеличению длительности и стоимости лечения.

Особенно серьезные проблемы в этом плане представляют штаммы Candida nоn-albicans, зачастую проявляющие более высокую устойчивость к традиционно используемым антимикотическим препаратам. Преобладание Candida albicans в этиологической структуре ВВК неоспоримо. Однако частота встречаемости указанных nоn-albicans видов Candida C. krusei, C. glabrata, C.

tropicalis, C. parapsilosis и др. какпричины острого и хронического ВВК в последние годы заметно увеличивается. По данным ряда авторов, частота выделения nоn-albicans видов при ВВК составила: C. krusei — 5–19%, C. glabrata — 5,1–35,3%, C. parapsilosis — 14,2%, C. tropicalis — 0,4–12,9% [3–6].

В отдельных случаях отмечается, что до 55% возбудителей ВВК составили nоn-albicans виды [7]. C. krusei — редкая, но важная причина ВВК. В большинстве случаев патология, вызванная данным возбудителем, сопровождается рецидивирующими симптомами, с трудом поддающимися лечению.

Исследователи указывают на тенденцию к данной инфекции у пожилых женщин, что, возможно, связано с повторными эпизодами ВВК, в связи с чем пациентки неоднократно получали курсовое лечение различными противогрибковыми средствами, преимущественно азолами, что привело к доминированию указанного возбудителя вследствие его резистентности к данным препаратам [8].

Орофарингеальный кандидоз, проявляющийся в виде воспаления слизистых оболочек полости рта, включая поверхность языка и губ, десны, небные миндалины и заднюю стенку глотки, — типичная локализация инфекции данной этиологии для иммунокомпрометированных лиц. По данным исследователей, в 2011 г.

данная патология выявлена у 60 585 ВИЧ-инфицированных пациентов; причиной в 76,2–88,9% случаев является C. albicans [2, 9].

Опасность колонизации слизистых оболочек зева и носа определяется риском развития инвазивного кандидоза (ИК), который у ВИЧ-инфицированных лиц имеет тенденцию к острому генерализованному течению, сопровождающемуся летальностью.

По данным Глобального фонда по борьбе с грибковыми инфекциями (Global Action Fund for Fungal Infections, GAFFI), ежегодно ИК регистрируется у более 750 тыс. человек и является причиной летального исхода более 350 тыс. человек в мире [10].

При этом можно утверждать, что в настоящее время формируется тенденция к увеличению значимости в этиологической структуре ИК видов Candida non-albicans [11, 12]. Так, при оценке видовой структуры ИК [12] выявленная доля C.

non-albicans как этиологического фактора — 70%, при этом 33% штаммов грибов были резистентны к флуконазолу или проявляли дозозависимую чувствительность.

Развитие резистентности к антимикотическим препаратам — закономерное явление, возникающее в процессе взаимодействия популяции грибов с противогрибковыми препаратами. Низкие показатели чувствительности изолятов C. albicans, выделенных от пациенток с ВВК, к флуконазолу обсуждаются в работе D. Marchaim et al.

: только 32% штаммов проявляли чувствительность к данному антимикотику [13].

По данным других исследований, показатели чувствительности изолятов, выделенных из секрета влагалища, к флуконазолу составили 32,4%, к итроконазолу — 21,6%; 10,8% и 24,3% штаммов имели дозозависимую чувствительность к соответствующим антимикотикам [14].

По результатам российских исследований, к препаратам азолового ряда типичные патогены Candida spp. проявляют выраженную резистентность: от 52,1% штаммов C.

albicans, резистентныхк клотримазолу, до 97,1% изолятов С. krusei, устойчивых к флуконазолу [5]. У представителей C.

albicans наиболее часто резистентность фиксировалась к кетоконазолу и флуконазолу (76,9 и 82,2% штаммов соответственно).

С другой стороны, ряд исследователей подтверждает сохранение высокой чувствительности клинических изолятов Candida spp. к противогрибковым препаратам. Так, по данным Г.Р. Байрамовой, 97,7% штаммов C.

albicans, выделенных при рецидивирующем ВВК, быличувствительнык наиболее часто используемым антимикотическим препаратам (итраконазолу, флуконазолу, кетоконазолу и миконазолу) [15]. Наряду с этим среди 34 штаммов C. non-albicans видов ко всем препаратам были чувствительны только 38,2%.

Наименьший удельный вес чувствительных штаммов отмечен у С. glabrata и C. krusei (17,6% и 0% соответственно).

Аналогичные результаты получены при анализе данных международных и национальных проектов, изучавших формирование резистентности Candida spp.

к азолам, проведенных в последние десятилетия [16], — чувствительность C. albicans к наиболее часто используемым азоловым антимикотикам установлена в диапазоне 90,2–94,4%.

Отмечается, что одним из самых устойчивых к флуконазолу видов дрожжей был и остается C. krusei.

Цель исследования: изучить этиологическую структуру инфекций, вызываемых представителями Candida spp., по данным за 2017 г., проанализировать показатели чувствительности выделенных штаммов к наиболее часто используемым антимикотикам.

Материал и методы

Исследованы 9558 образцов биосубстратов у пациентов многопрофильных клиник (поликлиники и стационары) г. Перми. Изоляты Candida spp.

были выделены из различных биологических материалов: отделяемое зева, носа, влагалища, цервикального канала, кал, отделяемое уха и др. Для видовой дифференциации Candida spp. использовали хромогенный агар (HiMedia Laboratories).

Для оценки чувствительности выделенных штаммов грибов применяли диско-диффузионный метод. Посевы осуществляли на агар Сабуро (Россия).

Использовали диски ДИ-ПЛС-50-01 (Россия), содержащие 80 ЕД нистатина, 40 мкг амфотерицина, 10 мкг клотримазола, 20 мкг кетоконазола и 40 мкг флуконазола. Инокулированные чашки с дисками инкубировали при температуре 25 °С±1 °С от 40 до 48 ч. Интерпретацию результатов осуществляли согласно инструкции производителя.

Результаты и обсуждение

Распределение частоты выделения различных представителей Candida spp. можно увидеть на рисунке 1.

Наиболее значимым биоматериалом было отделяемое мочеполовых путей (МПП): влагалища, цервикального канала, уретры.

Частота выделения представителей рода Candida из кала и отделяемого верхних дыхательных путей (ВДП) (слизь из зева, носа) была примерно одинаковой (15,1% и 15,9% соответственно).

Определение чувствительности к препарату Ридостин

Важно отметить, что основная масса выделенных представителей рода Candida, вошедших в данное исследование, не была типирована до вида — 71,3%.

Необходимость видовой идентификации возбудителя устанавливалась, с одной стороны, врачебными назначениями, с другой стороны — решением пациента; определяющим фактором во многих случаях становилась стоимость исследования.

Среди типированных возбудителей ожидаемо преобладали изоляты C. albicans (22,2%), C. tropicalis — наиболее редко встречаемый патоген — был выделен в 0,1% случаев (рис. 2).

Определение чувствительности к препарату Ридостин

Распределение нетипированных штаммов Candida spp. в зависимости от исследуемого биоматериала было следующим: в 70% случаев исследуемым материалом было отделяемое МПП, 16% — отделяемое ВДП, другие биоматериалы — 14%. При этом доля штаммов, не подвергшихся определению видовой принадлежности, выделенных из кала, чрезвычайно мала — 0,1%.

Видовое распределение выделенных штаммов в зависимости от биосубстрата представлено в таблице 1. При этом можно отметить тот факт, что взаимоотношения в тройке лидеров стабильны и не зависят от исследуемого биоматериала: на первом месте традиционно располагается C. albicans, далее С.

krusei и C. glabrata. Безусловно, серьезной проблемой является отсутствие видовой идентификации Candida spp. при исследовании отделяемого ВДП и МПП (72,3–85,6%).

Противоположная ситуация сложилась при выделении возбудителей рода Candida из кала — доля нетипированных штаммов составила всего 0,4%.

Определение чувствительности к препарату Ридостин

При оценке распределения указанных видов по частоте выделения среди идентифицированных возбудителей установлено, что доля C. albicans, изолированных из кала, составила 73,5%, изотделяемого МПП — 82,8%, ВДП — 86,9%. В группе Candida non-albicans лидировал вид С.

krusei: 23,1% изолятов, выделенных из кала; 10,1% — из отделяемого МПП и 7,7% — из отделяемого ВДП. C. glabrata выделены в 3,4%, 6,8% и 3,2% случаев соответственно. Редко встречаемый вид C.

tropicalis был выделен в0,2% случаев из отделяемого МПП и в 2,3% случаев из отделяемого ВДП.

У большинства типированных возбудителей была определена чувствительность к наиболее часто используемым антимикотикам. Исключение составили изоляты, полученные из кала: из 765 штаммов чувствительность к антимикотикам была изучена лишь у 8. Усредненные данные о чувствительности отдельных видов Candida spp.

представлены в таблице 2. У представителей C. albicans наиболее часто резистентность фиксировалась к кетоконазолу и флуконазолу: 83,3–100,0% штаммов, выделенных из различного биоматериала. Наиболее чувствительны представители данного вида к нистатину (50,0–77,1% изолятов) и амфотерицину (33,3–78,5%).

Чувствительность к клотримазолу варьирует, однако можно отметить наиболее низкие показатели резистентности к данному препарату выделенных штаммов С.

krusei — второго по частоте встречаемости патогена (5,9–19%), что имеет особое практическое значение в лечении поверхностных форм кандидоза, например ВВК, вызванного устойчивыми штаммами данного представителя Candida nоn-albicans. При этомвыделенные изоляты С.

krusei имели высокие показатели резистентности к флуконазолу и кетоконазолу: 52,9–75,0% и 30,8–75,0% штаммов соответственно. Помимо высокой чувствительности к клотримазолу (до 94,1% штаммов) данные изоляты проявляли чувствительность к нистатину (до 82,4%).

Профиль чувствительности изученных изолятов C. glabrata близок к таковому описанных представителей C. albicans: доля штаммов, чувствительных к амфотерицину, составила 83,0–85,7%, к нистатину — 66,7–85,7% штаммов.

К клотримазолу были чувствительны 42,9–56,7% штаммов, полученных из отделяемого МПП и ВДП, и до 100% штаммов, выделенных из других биологических материалов.

Максимальное количество резистентных штаммов выявлено по отношению к флуконазолу (57,1–100,0%) и кетоконазолу (76,7–85,7%).

Анализируя чувствительность изученных изолятов Candida nоn-albicans (табл. 2), можно прийти к выводу, что наиболее высокие показатели чувствительности к амфотерицину наблюдаются у штаммов C. glabrata и к клотримазолу у С. krusei и C. tropicalis.

Определение чувствительности к препарату Ридостин

Данные о резистентности штаммов, выделенных из МПП и ВДП, представлены на рисунке 3. При анализе резистентности выделенных штаммов можно отметить, что из ВДП выделены изоляты C. albicans и C. glabrata в целом, обладающие несколько более высокой устойчивостью к изученным антимикотикам, в то время как из МПП получены более устойчивые изоляты С. krusei.

Определение чувствительности к препарату Ридостин

С практической точки зрения нарушение микробиоценоза МПП у женщин в первую очередь отражается на вульвовагинальной зоне и приводит к росту альтернативной микрофлоры. Особенно это касается грибов рода Candida spp., о чем может свидетельствовать появление вагинального зуда.

В связи с этим является целесообразным включение в терапию для профилактического или лечебного применения антимикотиков, в частности препарата Клотримазол 2% крем вагинальный («Эспарма ГмбХ», Германия).

Аппликации проводятся перед сном в положении лежа на спине, со слегка согнутыми ногами, препарат (около 5 г) следует вводить во влагалище с помощью входящих в комплект одноразовых аппликаторов, что делает применение крема более комфортным и предотвращает возможность реинфицирования. 

Выводы

Таким образом, среди типированных возбудителей выявлено преобладание C. albicans независимо от биологического материала.

Установлено наличие высокой устойчивости выделенных изолятов к наиболее часто применяемым производным имидазола и триазола. При этом у большинства штаммов C.

nоn-albicans сохраняется чувствительность к клотримазолу (например, Клотримазол 2% крем вагинальный, «Эспарма ГмбХ», Германия), что особенно важно при лечении поверхностных форм кандидоза.

Выявлена высокая частота выделения штаммов, не подвергшихся видовой идентификации и, как следствие, определению чувствительности к противогрибковым препаратам, что вызывает особую тревогу вследствие использования эмпирического лечения, которое может способствовать развитию резистентности изолятов. Помимо этого, данный подход существенно затруднит изучение эпидемиологических показателей распространенности кандидоза.

Поделитесь статьей в социальных сетях

Врачи

        Многопрофильный медицинский центр ВиТерра в Беляево работает для вас с 2011 года.

Руководит клиникой Мостовой Илья Александрович, врач уролог-андролог, рефлексотерапевт, врач ультразвуковой диагностики, действительный член Профессиональной ассоциации андрологов России, участник Европейской ассоциации урологов (ЕАУ) и ряда других известных медицинских сообществ.

      Клиника ВиТерра в Беляево обеспечивает оказание качественных и доступных медицинских услуг пациентам из Москвы, регионов, ближнего и дальнего зарубежья. Мы сотрудничаем с ведущими  российскими и европейскими образовательными учреждениями, являемся   клинической  базой ряда кафедр медицинского института  РУДН.

      В числе наших сотрудников  — врачи всех специальностей, профессора, доктора и кандидаты медицинских наук, врачи высшей квалификационной категории, консультанты из ведущих клиник г. Москвы.

Здесь для вас прием ведут узкие специалисты и специалисты общей практики, работающие на самом современном оборудовании.

К тому же, все наши сотрудники — просто неравнодушные люди, которые готовы помочь каждому своему пациенту.

   Большинство услуг в медицинском центре ВиТерра в Беляево выполняется с использованием одноразового инструментария.

При этом режим обработки оборудования и инструментов полностью соответствует европейским стандартам, что позволяет исключить даже малейшую возможность передачи любой инфекции.

Оказываемые нами медицинские услуги абсолютно безопасны для каждого обеспокоенного состоянием своего здоровья пациента.

       Мы осуществляем высокоточную диагностику и в кратчайшие сроки выполняем  любые виды анализов. Хирурги ВиТерра проводят малоинвазивные операции и манипуляции на эндоскопическом оборудовании,  с применением безопасной анестезии.

       Являясь сторонниками индивидуального подхода к каждому пациенту мы гарантируем качественное и сверх внимательное отношение к любой беспокоящей вас проблеме.

Это значит, что обратившись в клинику ВиТерра в Беляево, вы гарантированно получите квалифицированную консультацию наших специалистов, ваша проблема будет тщательнейшим образом изучена, поставлен точный диагноз и даны все необходимые рекомендации либо назначено результативное и эффективное лечение.

        Комфорт для вас, наших пациентов, — одна из основ философии клиники ВиТерра в Беляево.  В нашем медицинском центре имеются бесплатные разноцветные бахилы, опрятная гардеробная, кулеры с прохладной питьевой водой собственного производства, бесплатный кофе, конфеты и шоколад.

Просторные коридоры с удобными диванчиками и легкая музыка позволят вам расслабиться и снять напряжение перед приемом или в ожидании результатов анализов. А если вас в клинике застал дождь, вы можете воспользоваться бесплатными зонтами.

В туалетных комнатах любой посетитель всегда найдёт все самое необходимое для личной гигиены:  крем для рук, освежающие салфетки  и даже парфюм!

      Добираться в клинику ВиТерра не только быстро, но и очень удобно: на автомобиле, метро или даже пешком. И даже в тех случаях, когда идти к врачу совершенно не хочется! 🙂 Вы легко сможете убедиться в этом сами.

Далее

     В клинике ВиТерра в Беляево вас всегда ждет радушный и гостеприимный прием. Для наших любимых пациентов — всегда приятные подарки, сюрпризы и акции.

Также мы запустили свою линию по производству качественной артезианской воды – теперь почувствовать нашу бережную заботу о вас можно даже вне стен клиники, всего лишь воспользовавшись удобной услугой доставки на дом чистой и полезной питьевой воды, выпускаемой под маркой ViTerra.

 Приходите в наш многопрофильный медицинский центр за отменным здоровьем, силами и энергией. Наши двери всегда открыты для вас!

Ридостин — официальная инструкция по применению, аналоги, цена, наличие в аптеках

  • Описание Лиофилизованная пористая масса белого цвета, гигроскопична.
  • Фармакотерапевтическая группа Иммуностимулирующее средство.
  • КОД АТС: LО3А.

Фармакологические свойства Фармакодинамика Ридостин является индуктором интерферона, действующее начало которого двуспиральная РНК при введении в организм индуцирует образование эндогенных интерферонов: лейкоцитарного (альфа-Инф), фибробластного (бета-Инф) и иммуногенного (гамма-Инф), которые на внутриклеточном уровне подавляют репродукцию вирусов и развитие внутриклеточных микроорганизмов (хламидий и т.д.) и таким образом препятствуют развитию инфекционного процесса. Ридостин на системном уровне стимулирует фагоцитоз нейтрофилов и макрофагов, обладает противовирусными, антихламидийными свойствами, действуя на Т- и В-клеточное звено, активирует натуральные киллеры, повышает устойчивость к инфекциям. Ридостин является индуктором раннего типа с максимумом продукции интерферона через 2-6 часов после введения и возвратом к фоновым значениям в течение 2 суток.

При применении ридостина в терапевтических дозах показана хорошая его переносимость, отсутствие у него сенсибилизирующих, мутагенных, кумулятивных и местно-раздражающих свойств. Препарат не обладает тератогенными свойствами и не оказывает действия на репродуктивную функцию.

Фармакокинетика При внутримышечном способе введения ридостин быстро всасывается, максимальная его концентрация в крови наблюдается уже через 15 мин.

Через час после введения препарат обнаруживается в тканях печени и почек (менее 10%); к концу первых суток незначительные количества (2-3%) — в желудочно-кишечном тракте и коже. Ридостин не проникает через гематоэнцефалический барьер.

Основное количество препарата (около 70%) выводится из крови в течение 4 часов после введения, преимущественно с мочой.

Показания к применению Профилактика и лечение гриппа, острых респираторных вирусных инфекций, инфекционно-воспалительных заболеваний, вызываемых вирусами простого, генитального, опоясывающего герпеса и хламидиями.

Противопоказания Индивидуальная непереносимость, беременность, тяжелые заболевания печени и почек, детский возраст до 7 лет.

Способ применения и дозы

Ридостин вводят парентерально (внутримышечно или подкожно). Перед употреблением содержимое ампулы (8 мг) растворяют в 2 мл 0,5 % стерильного раствора прокаина или воды для инъекций.

-для профилактики и лечения гриппа и ОРВИ у детей (с 7 лет) и взрослых ридостин в дозе 8 мг, растворенный в 1 мл 0,5 %-ного раствора прокаина, вводят внутримышечно в день обращения больного к врачу.

Второе введение препарата проводится через 2 дня при условии сохраняющейся лихорадки, интоксикации и риска обострения хронических воспалительных заболеваний верхних дыхательных путей и бронхов;

-при простом, генитальном и опоясывающем герпесе ридостин вводят внутримышечно в дозе 8 мг один раз в 3 дня. На курс лечения 3 инъекции; — при инфекционных урогенитальных заболеваниях ридостин вводят в дозе 8 мг один раз в 2 дня. На курс лечения — 4 инъекции. Для предотвращения рецидивов и в момент рецидива назначают 4 инъекции препарата с интервалом в 2 дня. При необходимости курс лечения повторяют через 2-3 месяца.

Побочные эффекты В редких случаях наблюдается повышение температуры

Передозировка Введение дозы, в 40 раз превышающей терапевтическую, способно вызывать незначительные нарушения кровообращения в кишечнике и почках, вызывать развитие умеренно выраженной лейко- и лимфопенической реакции, влиять на уровень обменных процессов (незначительное изменение в соотношениях белковых фракций крови, в повышении уровня креатинина, в активности щелочной фосфатазы, в снижении активности холинэстеразы крови). Эти нарушения носят кратковременный, обратимый характер и не требуют дополнительных фармакологических мер коррекции. Восстановление может быть ускорено проведением диуретической (фуросемид) или инфузионной детоксикационной терапией.

  1. Взаимодействие с другими лекарственными средствами Взаимодействия с другими препаратами не обнаружено.
  2. Форма выпуска По 8 мг (5 мг действующего вещества) в ампулах или флаконах стеклянных. По 10 ампул или флаконов с инструкцией по применению и скарификатором в картонных коробках или по 4; 5 ампул (флаконов) в коробки из ПС или ПХВ с инструкцией по применению и скарификатором
  3. Срок годности 2 года.
  4. Не использовать после истечения срока годности, указанного на ампуле/флаконе и на упаковке.
  5. Условия хранения При температуре от минус 12 °С до плюс 8 °С, в недоступном для детей месте.
  6. Условия отпуска из аптек По рецепту врача.

Изготовитель:ООО «Диафарм» Адрес: 633010, г. Бердск-10, Новосибирская обл., ая 112

Ридостин – купить по низкой цене в Нее в интернет‐аптеке, заказать

Ридостин Инструкция по применению

Иммуностимулирующий препарат бактериального происхождения

**** ВЕКТОР ГНЦ ВБ Вектор-Медика ЗАО ДИАФАРМ ЗАО

Россия

5 мг — ампулы (4) в комплекте с ножом ампульным или скарификатором — пачки картонные. 5 мг — ампулы (5) в комплекте с ножом ампульным или скарификатором — пачки картонные.

Лиофилизат для приготовления раствора для в/м и п/к введения

иммуномодулирующее, противовирусное, антибактериальное, противовоспалительное. Индуцирует выработку интерферона, стимулирует фагоцитарную активность макрофагов и нейрофилов. Обладает антимутагенной, антиканцерогенной, антиметастатической активностью.

— профилактика и лечения гриппа; — острых респираторных вирусных инфекций; — инфекционно-воспалительных заболеваний, вызываемых вирусами простого, генитального, опоясывающего герпеса и хламидиями.

— индивидуальная непереносимость; — беременность; — тяжелые заболевания печени и почек; — детский возраст до 7 лет.

В редких случаях наблюдается повышение температуры.

Цены на Ридостин в других городах

Купить РидостинРидостин в Санкт-ПетербургеРидостин в ПермиРидостин в КраснодареРидостин в Нижнем НовгородеРидостин в Ростове-на-ДонуРидостин в НовосибирскеРидостин в ВоронежеРидостин в СамареРидостин в ВолгоградеРидостин в КазаниРидостин в УфеРидостин в ЛипецкеРидостин в СаратовеРидостин в КрасноярскеРидостин в КировеРидостин в БелгородеРидостин в ЕкатеринбургеРидостин в КурскеРидостин в Оренбурге

Заказывая на Apteka.ru, можно выбрать доставку в удобную для вас аптеку рядом с домом или по дороге на работу.

Все пункты доставки в Нее – 4 аптеки

  • г. Нея, ул. Советская, д. 19Перейти на страницу аптеки»Аптека Вашей Семьи»ежедневно с 08:00 по 20:00
  • ВОЛОГДА, ООО Фирма *Квант-ВФ*ежедневно с 09:00 по 19:00
  • г. Нея, ул. Советская, д. 13Перейти на страницу аптекиКОСТРОМА, ООО *Фарма-Торг*ежедневно с 08:00 по 20:00

Часто задаваемые вопросы

  • По какой цене можно купить Ридостин в аптеках в Нее? Цена на Ридостин в аптеках в Нее от 0 руб.
  • Какая компания является производителем Ридостин? Производителем Ридостин является — ****
  • Есть ли доставка препарата Ридостин? Доставка препарата Ридостин осуществляется в 4 аптеки в Нее
  • Есть ли на Ридостин скидка? Информацию об акциях и скидках на Ридостин уточняйте на нашем сайте.

Интермедикал | Определение чувствительности к антибиотикам

Антибактериальная терапия – наиболее широко применяемый метод лечения широкого спектра заболеваний. Это обусловлено высокой эффективностью и относительной безвредностью метода. Однако не всегда возможно сразу подобрать необходимые препараты.

Современная фармацевтика обеспечила врачей-специалистов обширным выбором антибактериальных препаратов. Зачастую для лечения одного и того же возбудителя находится более 3 различных препаратов. Подобрать наиболее эффективный в каждом конкретном случае поможет анализ на определение чувствительности к антибиотикам.

Анализ на определение чувствительности к антибиотикам применяется при лечении не только ЗППП, но и многих других инфекционных заболеваний. Лечение любого заболевания, при котором применяется антибактериальная терапия лучше начинать с определения чувствительности патогенных микроорганизмов к антибиотикам.

Для чего необходимо определение чувствительности к антибиотикам?

Проведение таких анализов необходимо по нескольким причинам:

  • Определение наиболее эффективно действующего препарата;
  • Исключение «привыкания» патогенных микроорганизмов к терапии;
  • Замена препарата по причине неэффективности или аллергических реакций;
  • Сокращения срока лечения.

Как любой вид лабораторных исследований, анализ на чувствительность к антибиоткам абсолютно безопасен и не вызывает дискомфорта или боли. У пациента проводят забор образца биоматериала, далее в лабораторных условиях проводятся исследования.

Методы определения чувствительности к антибиотикам

Методы определения чувствительности бактерий к антибиотикам делятся на 2 группы: диффузионные и методы разведения.

Определение чувствительности бактерий к антибиотикам:
диффузионные методы

  • с использованием дисков с антибиотиками
  • с помощью Е-тестов

методы разведения

  • разведение в жидкой питательной среде (бульоне)
  • разведение в агаре

При определении чувствительности диско-диффузионным методом на поверхность агара в чашке Петри наносят бактериальную суспензию определенной плотности (обычно эквивалентную стандарту мутности 0,5 по McFarland) и затем помещают диски, содержащие определенное количество антибиотика.

Диффузия антибиотика в агар приводит к формированию зоны подавления роста микроорганизмов вокруг дисков. После инкубации чашек в термостате при температуре 35о-37оС в течение ночи учитывают результат путем измерения диаметра зоны вокруг диска в миллиметрах.

 Метод дисков — качественный и позволяет оценить, чувствителен или устойчив микроб к препарату.

На основании получаемых количественных данных (диаметра зоны подавления роста антибиотика или значения МПК) микроорганизмы подразделяют на чувствительные, умеренно резистентные и резистентные.

Для разграничения этих трех категорий чувствительности (или резистентности) между собой используют так называемые пограничные концентрации (breakpoint) антибиотика (или пограничные значения диаметра зоны подавления роста микроорганизма).

Пограничные концентрации не являются неизменными величинами. Они могут пересматриваться, в зависимости от изменения чувствительности популяции микроорганизмов. Разработкой и пересмотром критериев интерпретации занимаются ведущие специалисты (химиотерапевты и микробиологи), входящие в специальные комитеты.

Одним из них является Национальный комитет по клиническим лабораторным стандартам США (National Committee for Clinical Laboratory Standards — NCCLS).

В настоящее время стандарты NCCLS признаны в мире и используются как международные для оценки результатов определения чувствительности бактерий при многоцентровых микробиологических и клинических исследованиях.

Существуют два подхода к интерпретации результатов определения чувствительности: микробиологический и клинический. Микробиологическая интерпретация основана на анализе распределения значений концентраций антибиотика, подавляющих жизнеспособность бактерий. Клиническая интерпретация основана на оценке эффективности антибактериальной терапии.

Чувствительные микроорганизмы (susceptible)

Клинически к чувствительным относят бактерии (с учетом параметров, полученных in vitro), если при лечении стандартными дозами антибиотика инфекций, вызываемых этими микроорганизмами, наблюдают хороший терапевтический эффект.

При отсутствии достоверной клинической информации подразделение на категории чувствительности базируется на совместном учете данных, полученных in vitro, и фармакокинетики, т.е. на концентрациях антибиотика, достижимых в месте инфекции (или в сыворотке крови).

Резистентные микроорганизмы (resistant)

К резистентным (устойчивым) относят бактерии, когда при лечении инфекции, вызванной этими микроорганизмами, нет эффекта от терапии даже при использовании максимальных доз антибиотика. Такие микроорганизмы имеют механизмы резистентности.

Микроорганизмы c промежуточной резистентностью (intermediate)

Клинически промежуточную резистентность у бактерий подразумевают в случае, если инфекция, вызванные такими штаммами, может иметь различный терапевтический исход. Однако лечение может быть успешным, если антибиотик используется в дозировке, превышающей стандартную, или инфекция локализуется в месте, где антибактериальный препарат накапливается в высоких концентрациях.

С микробиологической точки зрения к бактериям с промежуточной резистентностью относят субпопуляцию, находящуюся в соответствии со значениями МПК или диаметра зон, между чувствительными и резистентными микроорганизмами. Иногда штаммы с промежуточной резистентностью и резистентные бактерии объединяют в одну категорию резистентных микроорганизмов.

Необходимо отметить, что клиническая интерпретация чувствительности бактерий к антибиотикам является условной, поскольку исход терапии не всегда зависит только от активности антибактериального препарата против возбудителя.

Клиницистам известны случаи, когда при резистентности микроорганизмов, по данным исследования in vitro, получали хороший клинический эффект. И наоборот, при чувствительности возбудителя может наблюдаться неэффективность терапии.

В определенных клинических ситуациях, когда недостаточно результатов исследования чувствительности обычными методами, определяют минимальную бактерицидную концентрацию.

Минимальная бактерицидная концентрация (МБК) — наименьшая концентрация антибиотика (мг/л или мкг/мл), которая при исследовании in vitro вызывает гибель 99,9% микроорганизмов от исходного уровня в течение определенного периода времени.

Минимальная бактерицидная концентрация (МБК) — это наименьшая концентрация антибиотика (мг/л или мкг/мл), которая при исследовании in vitro вызывает гибель 99,9% микроорганизмов от исходного уровня в течение определенного периода времени

Значение МБК используют при терапии антибиотиками, обладающими бактериостатическим действием, или при отсутствии эффекта от антибактериальной терапии у особой категории больных. Частными случаями для определения МБК могут быть, например, бактериальный эндокардит, остеомиелит или генерализованные инфекции у пациентов с иммунодефицитными состояниями.

В заключение хотелось бы отметить, что на сегодняшний день не существует методов, которые позволили бы с абсолютной достоверностью прогнозировать клинический эффект антибиотиков при лечении инфекционных болезней. Однако, данные результатов определения чувствительности могут служить хорошим ориентиром клиницистам для выбора и коррекции антибактериальной терапии.

Таблица 1. Критерии интерпретации чувствительности бактерий

Категория чувствительности микроорганизма Микробиологическая характеристика Клиническая характеристика
Чувствительный Не имеет механизмов резистентности Терапия успешна при использовании обычных доз
С промежуточной резистентностью Субпопуляция, находящаяся между чувствительной и резистентной Терапия успешна при использовании максимальных доз или при локализации инфекции в местах, где антибиотик накапливается в высоких концентрациях
Резистентный Имеет механизмы резистентности Нет эффекта от терапии при использовании максимальных доз

Что может служить образцом для проведения исследований?

Образец биоматериала определяется в зависимости от возбудителя заболевания. Могут использоваться:

  • Слюна;
  • Моча;
  • Соскоб;
  • Грудное молоко;
  • Секрет простаты;
  • Мазок из цервикального канала;
  • Мазок из уретры;
  • Мазок с задней стенки глотки;
  • Мазок из носа;
  • Сперма.

Как подготовиться к проведению анализа?

Особой подготовки не требуется. Следует только выполнить несколько правил, для получения наиболее эффективного результата.

Определение чувствительности к антибиотикам поможет определить антибактериальные препараты, подходящие именно Вам. Обеспечат эффективное лечение, исключат случаи рецидива, уменьшат срок лечения.

Пожалуйста, не занимайтесь самолечением!

Помните определить диагноз и правильно назначить лечение может только врач.

Оставьте комментарий

Ваш e-mail не будет опубликован. Обязательные поля помечены *