ПЦР диагностика инфекции: Helicobacter pylori

Заболевания желудка и 12-перстной кишки встречаются у 20-50% детей, причем зачастую проблемы с пищеварением начинаются уже в возрасте от 1 до 6 лет.

Самые распространенные болезни желудочно-кишечного тракта — хронический гастрит (воспаление слизистой оболочки желудка) и дуоденит (воспалительный процесс переходит на 12-перстную кишку).

При отсутствии своевременного лечения часто наступает изъязвление слизистой оболочки и развивается язвенная болезнь.

ПЦР диагностика инфекции: Helicobacter pylori

Частая причина развития заболеваний верхних отделов пищеварительного тракта – хеликобактерная инфекция, возникающая при проникновении в желудок и 12-перстную кишку бактерии Helicobacter pylori (хеликобактер пилори).

  • Дети обычно заражаются бактерией от родителей и родственников в процессе приема пищи, особенно при пренебрежении правилами личной гигиены (облизывание упавших сосок, конфет, пробы пищи при ее приготовлении, совместный прием пищи одной ложкой или из одной тарелки и т.д.).
  • Возможен и контактно-бытовой путь – через грязные руки, при поцелуях, использовании плохо вымытой посуды, одного полотенца
  • Инфекция может попадать в пищеварительный тракт и при проведении зондирования желудка, во время эндоскопического исследования, если правила обработки инструментария нарушаются.

В результате вышеперечисленных факторов бактерия хеликобактер пилори попадает в желудок и проникает в его слизистую оболочку. Микробы становятся постоянными обитателями пищеварительного тракта, создавая себе благоприятные условия для выживания и размножения. Для этого бактерии создают вокруг себя щелочную реакцию, защищаясь от воздействия соляной кислоты. В то же время аммиак, выделяемый Helicobacter pylori, увеличивает секрецию соляной кислоты и повышает кислотность желудочного сока. В результате клетки слизистой желудка повреждаются, и постепенно возникает хронический воспалительный процесс – гастрит.

Факторы риска развития хеликобактерного гастрита:

  • Непосредственное повреждающее воздействие хеликобактер пилори на клетки желудка
  • Неправильное питание – большие промежутки между едой, плохое пережевывание пищи, злоупотребление острыми, солеными, жареными, очень горячими или холодными блюдами
  • Пищевая аллергия с развитием воспалительного процесса в желудке при попадании аллергенов – молока, рыбы, яиц, конфет, сои и т.д.
  • Прием некоторых лекарственных препаратов, вызывающих повреждение слизистой оболочки желудка (обезболивающие, нестероидные противовоспалительные средства, гормоны)
  • Эндокринные расстройства (сахарный диабет, тиреотоксикоз, ожирение), почечная недостаточность
  • Снижение защитных сил организма

Необходимо отметить, что в здоровом организме микробы хеликобактер пилори никак себя не проявляют. А вот при повреждении слизистой оболочки желудка в результате вышеперечисленных факторов проникновение бактерий в клетки облегчается, и они вызывают развитие воспалительного процесса.

  • Боли в эпигастральной области (в верхней части живота) через 30-60 минут после еды или на голодный желудок, чувство тяжести, переполнения
  • Тошнота, изжога, отрыжка, иногда – рвота кислым содержимым желудка или съеденной пищей
  • Нарушается работа других органов ЖКТ – кишечника, поджелудочной железы и могут беспокоить поносы (реже запоры)
  • Если своевременно не начать лечение воспалительного процесса, повреждение слизистой оболочки усиливается, возникают эрозии и язвы желудка и 12-перстной кишки, которые могут приводить к кровотечениям и даже прободению органа с развитием перитонита.
  • При длительном течении гастрита начинает страдать весь организм: снижается выработка и усвоение витаминов, появляется анемия (что приводит к появлению общей слабости, утомляемости, раздражительности, колебаниям настроения), поражению кожи и слизистых оболочек (дерматиты, стоматиты), сердечно-сосудистой и нервной системы (колебания артериального давления, обмороки, появления чувства онемения, «ползанья мурашек», снижение внимания и памяти и др.)

Диагностика хеликобактерной инфекции

  • Прямой метод – взятие кусочка ткани из слизистой оболочки желудка во время фиброгастродуоденоскопии и последующее гистологическое исследование
  • Непрямые методы – уреазный, дыхательный тест и другие методики
  • Биорезонансная диагностика – выявление бактерии хеликобактер пилори и ее активности при проведении вегетативного резонансного теста

ПЦР диагностика инфекции: Helicobacter pylori

Обращайтесь за медицинской помощью в медицинский центр «Доктор Чой» и мы поможем вам забыть о проблемах со здоровьем.

Анализ кала на Хеликобактер пилори (Helicobacter pylori)

Тип бактерий хеликобактер пилори способен вызывать многие из заболеваний, поражающих органы пищеварения, в том числе и язвенную болезнь.

ПЦР диагностика инфекции: Helicobacter pylori

До недавнего времени существование данного микроорганизма и его влияние на здоровье человека вызывало у многих медиков большие сомнения. Теперь то, что язвенная болезнь может возникнуть, как и любое инфекционное заболевание, является доказанным фактом.

Helicobacter pylori (H. pylori)– это бактерия, которая обитает в покрывающей слизистую оболочку желудка субстанции-слизи. Инфицирование H. pylori является широко распространенным явлением. Согласно данным эпидемиологов, обнаружить наличие в желудке этой бактерии можно приблизительно у половины людей на планете, а в ряде регионов у 80–100% населения.

Инфицирование, как правило, происходит еще в детском возрасте и сохраняется на протяжении все жизни. По большей части присутствие H. pylori не создает каких-либо проблем, но у ряда лиц в качестве реакции на инфицирование формируются локальные воспалительные процессы, проявляющиеся через дуоденит, гастрит.

Приблизительно у 5% инфицированных лиц бактерией Н. pylori, развиваются язвенные процессы двенадцатиперстной кишки, желудка. Реже формируются хронические воспаления, связанные с бактерией H.

pylori, что приводит к атрофическим явлениям в слизистой оболочке (атрофическому гастриту) – патологии, связанной с вероятностью формирования онкологических процессов в желудке. Риск развития такого рода опасных состояний во многом зависит от штамма H.

pylori и вирулентных факторов, индивидуальных особенностей и характерных реактивных явлений на наличие H. pylori, воздействия жизненных условий жизни, в том числе, диет. Изучаемая инфекция эффективно элиминируют (эрадикация H. pylori), но данная ситуация не исключает вероятность последующего инфицирования в будущем. Вопрос о важности эрадикации H.

pylori должен решаться в индивидуальном порядке. Тактические действия лечащего врача в основном зависит от клинических проявлений наличия инфекции и, что не менее важно, присутствия патологических изменений в слизистой оболочке двенадцатиперстной кишки и желудка.

Бактерия хеликобактер пилори устойчива ко многим видам воздействия, хорошо сохраняется при неблагоприятных условиях окружающей среды, что позволяет ей активно размножаться на слизистой желудка.

Что показывает анализ

Анализ на хеликобактер пилори помогает выявить присутствие патогенного микроорганизма в организме, так как она может в течение долгого времени никак не проявлять себя.

Появление первых симптомов патологии начинается после снижения уровня иммунитета. После ее выделения и посева появляется возможность подобрать препараты, способные остановить рост и развитие данного микроорганизма.

Как проводится анализ

Анализ имеет смысл проводить в течение недели после появления первых симптомов заболевания, дальше концентрация микроорганизмов в кале значительно уменьшиться и обнаружить их будет сложно.

Необходимый результат, выявить хеликобактером можно одним из трех способов:

  • ПЦР.
  • Бакпосев.
  • ИФА (проводится параллельно, изучается кровь).

В анализе кала ищут антиген к хеликобактер пилори или остатки частей ДНК. Для этого в лаборатории имеется контрольный образец генетического кода бактерии, специальный прибор ищет подобные частицы в предоставленном для исследования материале.

Cовременная антихеликобактерная терапия у детей и подростков

информация для специалистов Cовременная антихеликобактерная терапия у детей и подростков

Инфекция Helicobacter pylori (НР) имеет глобальное значение и широкое распространение, в том числе и в нашей стране. Доля инфицированных НР людей в развитых странах составляет около 50%, в менее развитых – до 80-90%.

Проблема пилорического хеликобактериоза в педиатрии также стоит достаточно остро. Уже у новорожденных НР обнаруживается в 5,4% случаев, а к 13-15 годам инфицированность достигает 58-72%. В 1994г.

Международное агентство по изучению рака заключило, что действие Helicobacter pylori «канцерогенно для человека» (канцероген I группы).

Это решение основано на том, что HР является важнейшим этиопатогенетическим фактором в развитии язвенной болезни и хронического НР-ассоциированного гастрита, что приводит к развитию атрофического мультифокального гастрита, аденокарциномы желудка (55% — в менее развитых странах, 42% — в целом), MALT- лимфомы.

Хронический НР-ассоциированный гастрит — наиболее распространенный вариант гастрита. Заражение HР происходит преимущественно в детском возрасте и без лечения персистенция микроорганизма остается пожизненной.

В зависимости от вирулентных свойств Helicobacter pylori и генетических особенностей макроорганизма исходы инфицирования H. pylori различны.

Практически у всех инфицированных индивидуумов микроорганизм вызывает воспалительные изменения в гастродуоденальной слизистой оболочке, которые и представляют собой собственно субстрат болезни.

Основные факторы риска заражения Helicobacter pylori — низкий социально-экономический статус, большая скученность людей и неудовлетворительные санитарные условия.

Большинство данных свидетельствует в пользу фекально-орального и орально-орального путей передачи.

Родители и сибсы инфицированных детей, вероятнее всего, тоже инфицированы, так как имеется определенная семейная предрасположенность, а если инфицированы отец и мать, то риск инфицирования детей повышается.

Helicobacter pylori — это спиралевидная грамотрицательная бактерия шириной 0,5 микрон и длиной от 2 до 6,5 микрон. Основные отличительные особенности ее — многослойная оболочка, униполярный жгутик (с одной стороны) и выраженная уреазная активность.

Форма микроорганизма и наличие жгутика позволяют ему проникать через барьер слизистой оболочки желудка (СОЖ). Высокая уреазная активность H. pylori в значительной степени способствует ее колонизации и выживаемости в агрессивной среде, т.к.

повышает сопротивляемость микроорганизмов к низкому внутрижелудочному рН.

Повреждающее действие Helicobacter pylori на слизистую оболочку обусловлено ее свойством выделять ферменты (уреаза, протеазы, фосфолипазы) и бактериальные цитотоксины.

Наиболее патогенными являются VacA-штамм НР, продуцирующий вакуолизирующий цитотоксин, приводящий к образованию цитоплазматических вакуолей и гибели эпителиальных клеток, и CagA-штамм, экспрессирующий ген, ассоциированный с цитотоксином.

Этот ген кодирует белок массой 128 кДа, который оказывает прямое повреждающее действие на СОЖ. Последующее присоединение местной и системной воспалительной реакции приводит к более глубокому повреждению стенок слизистой оболочки желудка. H.

pylori вызывает повышение уровня сывороточного гастрина, который, в свою очередь, увеличивает продукцию соляной кислоты, при этом возникает определенное ингибиторное действие соматостатина, вырабатываемого D-клетками антрального отдела желудка, на гастринпродуцирующие G-клетки.

Избыточная продукция соляной кислоты в желудке, которая, в течение длительного времени воздействуя на слизистую оболочку двенадцатиперстной кишки (ДПК), приводит к ее повреждению, влечет за собой возникновение в двенадцатиперстной кишке очагов желудочной метаплазии.

Особенностью Helicobacter pylori является распознавание и связывание с рецепторами клеток желудочного эпителия, за счет чего она плотно примыкает к их поверхности, а также к клеткам эктопированного желудочного эпителия по всему желудочно-кишечному тракту, например, в пищеводе (пищевод Баррета) и в ДПК (в участках желудочной метаплазии).

Практически у всех инфицированных лиц наблюдаются гистологические признаки активного ХГ, однако клинически выраженные симптомы заболевания развиваются только у некоторых из них.

У пациентов с явлениями только антрального гастрита в последующем чаще развивается язва двенадцатиперстной кишки, тогда как у больных с явлениями пангастрита, особенно с атрофией слизистой оболочки и кишечной метаплазией, существует высокий риск возникновения язвы желудка и аденокарциномы.

Между гастритом, вызванным HР, и язвой ДПК имеется самая тесная связь. Почти 95% пациентов с ЯБ ДПК инфицированы Helicobacter pylori. Инфекция НР не только принимает участие в ульцерогенезе, но и задерживает репарацию гастродуоденальных язв, т.е., снижая качество заживления, служит ведущей причиной рецидива болезни.

Диагностика хеликобактерной инфекции включает в себя целый ряд тестов, позволяющих верифицировать ассоциацию заболевания с данным микроорганизмом.

Основные методы диагностики Helicobacter pylori и показания к их применению

Метод диагностики Показания к применению Чувствительность, в % Специфичность, в %
I. Инвазивные
Морфологический Первичная диагностика НР 90% 90%
Быстрый уреазный тест Первичная диагностика НР 90% 90%
Микробиологический Определение чувствительности НР к антибиотикам 80-90% 95%
II. Неинвазивные
Серологический Скрининговая диагностика НР 90% 90%
Дыхательный тест Контроль полноты эрадикации 95% 100%
Определение ДНК НР методом ПЦР Контроль полноты эрадикации 95% 100%
Читайте также:  Как определить висцеральный лейшманиоз

Если диагностическая эндоскопия показана для установления диагноза, то наиболее предпочтительным методом для выявления Helicobacter pylori считается биопсия тканей и исследование их уреазной активности. Быстрый уреазный тест — один из методов обнаружения HР в материале, который основан на высокой уреазной активности микроорганизма. Чувствительность и специфичность этого теста превышает 90%.

Альтернативным методом обнаружения H. pylori является морфологическое исследование зафиксированных тканей, также полученных при биопсии СОЖ.

Микроорганизм обнаруживается при стандартной окраске препарата различными красителями (акридиновым оранжевым, красителем Гимзы, серебрением по Вартин – Старри), однако, чувствительность этого метода значительно варьирует в зависимости от техники фиксирования препарата, количества микроорганизмов в препарате и опыта врача-гистолога. Метод позволяет не только выявить НР, но и количественно определить степень обсеменения. Чувствительность и специфичность морфологических методов достигает более 90%.

Посев Helicobacter pylori (микробиологический метод) не часто используется для диагностики в клинической практике, так как он достаточно дорог, сопряжен с определенными трудностями в проведении, а также длителен по исполнению. Как правило, его применяют для выявления чувствительности микроорганизма к антибиотикам при лечении устойчивых форм заболеваний.

Неинвазивные методы обнаружения HР включают серологический, дыхательный тесты и ПЦР — диагностику. Антитела к IgG или IgA, связывающие различные бактериальные антигены, могут быть выявлены при помощи иммуноферментного анализа. Хотя уровень антител после успешного лечения снижается, он, тем не менее, остается повышенным достаточно длительное время (до 3 лет).

Этот своеобразный «серологический рубец» ограничивает возможности применения серологических исследований для оценки результатов лечения и диагностики повторного инфицирования. Серологический тест является методом выбора для выявления инфицирования Helicobacter pylori в популяционных эпидемиологических исследованиях. Чувствительность и специфичность метода составляет около 90%.

Дыхательный тест с мочевиной, меченной изотопами 13С или 14С, идеально подходит для оценки результатов лечения и диагностики повторного инфицирования, поскольку он положителен только при наличии активной инфекции.

Широкое внедрение в клиническую практику дыхательного теста с мочевиной позволило бы отнести его к методам выбора для контроля эффективности лечения.

Чувствительность и специфичность дыхательного теста составляют более 95%.

Определение ДНК НР (в слизистой оболочке желудка, кале, слюне) с помощью полимеразной цепной реакции, является самым точным методом диагностики инфекции, особенно в тех случаях, когда бактерия приобретает кокковидную форму (после курса антибактериальной терапии) и другие методы диагностики дают ложноотрицательные результаты.

Современная терапия хронических заболеваний верхних отделов пищеварительного тракта (в первую очередь язвенной болезни) включает в себя – в качестве обязательного компонента – проведение эрадикации Helicobacter pylori в случае обнаружения микроорганизма у больных в СОЖ.

После эрадикации инфекции уже через месяц полностью исчезает нейтрофильная инфильтрация эпителия и собственной пластинки слизистой оболочки, а в более поздние сроки исчезает мононуклеарная инфильтрация.

Таким образом, хронический неатрофический гастрит полностью излечивается после уничтожения Н. pylori.

В 2005 году Маастрихтским консенсусом-3 приняты новые стандарты лечения больных с НР-ассоциированными кислотозависимыми заболеваниями, которые явились мерами упреждающего реагирования на рост резистентности Н.

pylori  по отношению к ранее рекомендованным стандартам терапии.

Суть основных положений, согласно рекомендациям Европейской рабочей группы по изучению НР (EHPSG) (консенсус Маастрихт – 3) :

  • — возможно увеличение курса эрадикационной терапии до 14 дней;
  • — применение 7-дневных схем оправдано, если продемонстрированы их эффективность и рентабельность;
  • — не существует отдельных показаний для проведения эрадикации у детей и подростков (лечение проводится, как у взрослых, с расчетом суточных доз препаратов, исходя из массы тела).

В качестве терапии первой линии рекомендуется использовать тройные схемы на основе ингибитора протонной помпы (ИПП) и двух антибактериальных препаратов.

По данным ряда исследований, при использовании в схемах эрадикации НР различных ИПП в стандартных дозах 2 раза в день (эзомепразол 20 мг 2 раза, рабепразол 20 мг 2 раза, лансопразол 30 мг 2 раза и омепразол 20 мг 2 раза), достоверных различий в частоте эрадикации, а также скорости рубцевания язв не выявлено.

Наиболее приемлемым вариантом тройной терапии первой линии является протокол: омепразол 20 мг × 2 раза или другие ИПП в оптимальных дозировках, кларитромицин 500 мг × 2 раза, амоксициллин 1000 мг × 2 раза в сутки, в течение 7 – 10 дней.

В терапии первой линии Маастрихт-3 предполагает возможность замены амоксициллина на метронидазол (500 мг × 2 раза), если резистентность наиболее распространенных штаммов НР к метронидазолу не превышает 40%.

В нашем регионе частота антибиотикорезистентности штаммов НР к метронидазолу колеблется от 40% до 55,5%, поэтому использование тройных эрадикационных протоколов, включающих этот препарат, недостаточно эффективно.

Альтернативной схемой считается квадротерапия, включающая: омепразол 20 мг × 2 раза или другие ИПП в оптимальных дозировках, коллоидный субцитрат/субсалициллат висмута 120 мг × 4 раза, метронидазол 500 мг × 2 раза, тетрациклин 250 мг × 4 раза в сутки (который может заменяться фуразолидоном 100 мг ×4 раза в сутки). Квадротерапия рассчитана на 7 -10 дней и в отдельных случаях может считаться терапией 1-й линии. При этом необходимо соблюдать возрастные дозы препаратов.

Проведенные в нашей стране исследования у взрослых показали, что одним из протоколов выбора является 7-дневная тройная эрадикационная терапия ИПП-кларитромицин-амоксициллин (эрадикация наступает у 80-81,5% пациентов). Следует отметить, что при использовании 14-дневного протокола эффективность эрадикации возрастает до 96,2%, т.е., возрастает вероятность более успешного лечения.

Создает предпосылки для улучшения приверженности больных к лечению и дает существенную экономическую выгоду использование комбинированных препаратов, включающих все составляющие компоненты терапии

ПЦР диагностика инфекции: Helicobacter pyloriКомбинированным препаратом, соответствующим рекомендациям Маастрихт-3, зарегистрированным в Республике Беларусь, является ПептиПак (PeptiPac). В одной упаковке имеется семь блистеров, каждый из которых содержит суточный набор лекарственных средств для проведения эрадикации 1-й линии: омепразол (Омепрал) 20 мг × 2 раза, кларитромицин (Кларикар) 500 мг × 2 раза, амоксициллин (Амоксикар) 1000 мг × 2 раза в день. Удобство в распределении суточной дозы позволяет соблюдать комплаенс (обязательный интервал между приемом составляет 12 часов), что важно в достижении положительного эффекта от лечения (если пациент принимает только 75 % предписанных лекарств, то эффективность схемы снижается на 25 %).

При назначении ПептиПака детям в возрасте 12-15 лет суточная доза антибактериальных препаратов сокращается в 2 раза (кларитромицин 250 мг х 2 раза, амоксициллин 500 мг х 2 раза), омепразол 20 мг назначается однократно. Подросткам старше 15 лет препарат назначается в стандартной дозе.

Неудачи в терапии НР-инфекции связаны, прежде всего, с уровнем первичной резистентности к антибактериальным препаратам, входящим в схему лечения.

Среди прочих факторов, снижающих эффективность эрадикационной терапии, являются плохой комплаенс, курение, высокая базальная кислотность, предшествующий долгий прием антисекреторных средств, низкая концентрация в сыворотке крови антихеликобактерных IgG, высокая обсемененность слизистой оболочки желудка микроорганизмами HP и пр.

При безуспешной элиминации НР с использованием схем 1-й и 2-й линии терапии дальнейшее лечение целесообразно проводить после определения чувствительности микроорганизма к выбранному антибиотику.

Применяемые в терапии антибиотики, висмутсодержащие препараты и ИПП подавляют деятельность бактерий Helicobacter pylori, что иногда приводит к получению ложноотрицательных результатов уреазного теста, гистологического исследования, бактериального посева и дыхательного теста. Поэтому контроль эрадикации проводится двумя методами не ранее чем через 4 недели по окончании курса лечения и 2 недель после отмены ИПП.

Литература:

  1. Аруин Л.И. Качество заживления гастродуоденальных язв: функциональная морфология, роль методов патогенетической терапии // Экспериментальная и клиническая гастроэнтерология. Репринт. 2006. 5с.

  2. Бовбель И.Э. Сравнительный анализ клинико-морфологических изменений и показателей липидного обмена, уровня среднемолекулярных пептидов у детей с хроническим гастродуоденитом Автореф. дисс., канд. мед. наук. Минск,1999.– 22с: .

  3. Болезни пищевода и желудка. Ивашкин В.Т., Шептулин А.А. Кратк. практическое руководство. – М.: МЕДпресс-информ, 2002. – 144с.

  4. Исаков В.А. Терапия кислотозависимых заболеваний ингибиторами протонного насоса в вопросах и ответах // Гастроэнтерология / хирургия. Репринт.2006, 7с.

  5. Лапина Т.Л. Макролидный антибиотик кларитромицин в эрадикационной терапии инфекции Helicobacter pylori // РМЖ. Приложение. Болезни органов пищеварения. Том 8, №1, 2006. С.39-42.

  6. Логинов А.Ф. «Маастрихт-3» – современная тактика диагностики и лечения инфекции Helicobacter pylori // Фарматека. №12 (127) 2006. — С. 46-48.

  7. Маев И.В., Самсонов А.А. Современные стандарты лечения кислотозависимых заболеваний, ассоциированных с H. pylori (материалы консенсуса Маастрихт-3) // Гастроэнтерология. Приложение к журналу Consilicum medicum №1, 2006. С.3-8

  8. Пиманов С.И., Макаренко Е.В. Анализ эффективности протоколов эрадикации инфекций Helicobacter pylori // Рецепт. – 2005. — № 1. – С. 19-23.

  9. Хавкин А.И., Жихарева Н.С. Современные принципы антихеликобактерной терапии у детей// Русский Медицинский Журнал. Том 13, №3, 2005. С.137-139.

А.В. Сукало, И.Э. Бовбель, В.Ю. Малюгин

Медицинская панорама №2, 2007г.

Дыхательный тест для выявления Хеликобактер пилори

На сегодняшний день существует несколько методик, чтобы выявить хеликобактер пилори: анализ на антитела к хеликобактер пилори, анализ кала способом пцр, уреазный дхательный тест, биопсия, цитология. Самыми эффективными являются ифа (иммуноферментный анализ) на хеликобактер и анализ кала (пцр).

Диагностика хеликобактер пилори проводится двумя методами:

  • инвазивный (эндоскопия с биопсией)
  • неинвазивный (лабораторные методы).

Надежным методом определения хеликобактер является инвазивный. Анализ на бактерию проводят всем, кто жалуется на боли и дискомфорт в желудке.

Выявление pylori igg антител является обычным делом для исследования эпидемиологии инфекции.

Ифа

Иммуноферментный анализ на антитела IgG позволяет узнать концентрацию антител в крови относительно хеликобактер в организме человека. Количество антител определяется с помощью различных химических реакций. IgG – показатель, который подтверждает присутствие в организме бактерии. Высокий уровень igg к helicobacter pylori может сохраняться до и после устранения микроорганизма.

Дыхательный тест – определение и его виды

 Дыхательный тест на выявление хеликобактер пилори – это диагностика инфекции, которая позволяет выявить активность хеликобатер пилори, оценить уровень заражения.

Гастроэнтерологи, терапевты, педиатры часто применяют его в своей практике. Дыхательный тест на хеликобактер пилори применяется для первичной диагностики бактерии.

Еще используют для контроля лечебного процесса заболевания и проверки действенности терапевтического лечения.

Метод является абсолютно безопасным, самым эффективным и востребованным в медицине на сегодняшний день. Анализ показывает продукты жизнедеятельности бактерии в воздухе, который вдыхает пациент.

  • Есть два основных вида метода. Они отличаются по реагирующему компоненту:
  • Более точный результат дает углеродный дыхательный анализ.
  • Преимущества и недостатки метода
  • Этот респираторный метод имеет свои преимущества:
  1. Результат готов за короткий промежуток времени (20-25 минут).
  2. Достоверность результата 90-95%.
  3. Тест не наносит вреда организму человека.

Так как у метода одни достоинства он не имеет противопоказаний. Но результат будет точным только в том случае, если к тесту правильно подготовиться.

Подготовка к дыхательному тесту

Чтобы тест дал самые точные результаты, рекомендуется специальная подготовка к дыхательному тесту:

  • за месяц до прохождения теста нельзя принимать антибиотики;
  • за три дня до обследования не употреблять бобовые и спиртные напитки;
  • за 6 часов до сдачи анализа ничего не есть;
  • за 14 дней до обследования исключить прием препаратов, которые подавляют течение; физиологических и ферментативных процессов в организме;
  • за несколько часов нельзя жевать жвачку, курить;
  • последний прием пищи не позднее 22 часов, это должен быть легкий ужин;
  • за час до обследования можно выпить не более 10 мл воды;
  • чтобы результат анализа был точным, пациент не должен двигаться;
  • перед обследованием хорошо почистить зубы и ротовую полость.
Читайте также:  Сдать кровь на анализ предрасположенности раарвития сахарного диабета 2 типа и ожирения

Очень важно подготовиться к тесту правильно, иначе точного результата не будет. Если пациент не смог выполнить все правила, он должен сообщить об этом врачу и ему будет назначено другое время.

Как проводится тест

Процедуру проводят в условиях стационара под наблюдением специалиста. Если обследование проводят с помощью трубки, манипуляция длится не более 15 минут. Если используется электронный прибор, время процедуры составляет 10 минут.

Проводится процедура просто:

  • пациент принимает удобное положение
  • в рот кладется пластиковая трубка, а дыхание должно быть в обычном режиме
  • желательно не касаться трубки языком и небом, чтобы туда не попала слюна
  • если скапливается слюна, ее разрешается сплюнуть или сглотнуть, вытащив трубку, берется проба воздуха
  • первый этап манипуляции продолжается 6 минут
  • пациенту дают выпить раствор карбамида
  • трубку помещают опять в рот
  • второй этап также длится 6 минут, проводится исследование воздуха
  • после этого выдается результат.

Расшифровка результатов анализа и показатели нормы

Нормой является, когда разница между показателями первого и второго этапа обследования равна нулю. Если в организме имеется хеликобактер, показатель будет выше нуля.

При показателе:

  • следовое значение — 1, 5 -3,5, микроорганизма находится в неактивной фазе и от него можно быстро избавиться;
  • 3,5 — 5.5 – низкий уровень;
  • малый — до 7 промилле;
  • от 7 до 15, бактерия в активной фазе, размножается, процесс лечения затрудняется;
  • выше 15 – высокий уровень обсеменения.

При любом положительном результате, терапию нужно начинать сразу, это позволит избежать осложнений и болевых ощущений. Но схема лечения хеликобактер должна быть составлена врачом.

Противопоказания к проведению

Метод не имеет противопоказаний, так как не включает в себя никаких вмешательств и нагрузок. Его можно применять для всех, без ограничений.

Анализы крови

При жалобах пациента на боли в желудке, любой дискомфорт, при функциональных расстройствах пищеварения, при гастритах и язвенной болезни сдается анализ крови на хеликобактер пилори. Антитела к helicobacter pylori в крови являются показателем заражения человека бактерией хеликобактериоза.

Сдавать кровь на бактерию хеликобактер рекомендуется при:

  • слабом иммунитете
  • наследственная предрасположенность к онкологическим заболеваниям желудка
  • в качестве профилактической диагностики
  • с целью оценки полученного лечения от инфекции.

Как подготовиться к анализу?

Перед анализом необходимо за 8 часов до проведения теста не принимать пищу, кофе, чай, спиртные напитки, не курить. Этот анализ на хеликобактер пилори определяет количество иммуноглобулинов.

Когда в организм человека попадает определенный токсин, вирус, микроб, иммуноглобулины взаимодействуют с ними и нейтрализуют эти вредные вещества.

Анализ показывает взаимодействие возбудителя болезни и иммуноглобулинов, что дает возможность установить, есть ли хеликобактер пилори в желудке или двенадцатиперстной кишке.

Преимущества и недостатки

Преимущества данного теста:

  • диагностическая процедура не дорогая;
  • высокая точность результата;
  • анализ доступен для всех.

Тест на хеликобактери пилори имеет свои недостатки:

  • имеются факторы, которые влияют на результат анализа;
  • некоторые пациенты испытывают страх при заборе крови;
  • тщательный результат получают через 4-6 дней.

Расшифровка анализа

Расшифровка результата анализа крови на хеликобактер пилори можно сделать и без медицинских навыков. Антитела разделяют на категории A, G, M. Напротив каждой категории на бланке имеется результат. Если все показатели анализов крови на хеликобактер пилори не превышают норму, значит бактерии в организме нет:

  • иммуноглабулин LgG отсутствует или значительно ниже нормы: бактерии отсутствуют в организме;
  • LgG обнаружен: хеликобактриоз есть или был перенесен раньше;
  • иммуноглабулин LgM не обнаружен или ниже нормы: условная норма хеликобактер пилори;
  • LgM класса обнаружен: начальная стадия заболевания;
  • иммуноглабулин LgA не обнаружен в крови: это может свидетельствовать о ранней стадии болезни, недавно проведенной терапии антибиотиками или больной на этапе выздоровления.

Противопоказания

Анализ крови на хеликобактер не проводят:

  • при судорогах
  • при повышенной возбудимости больного
  • если в месте инъекции имеется поражение кожи.

Анализ крови на антитела при флебите вен также не назначают.

Анализ кала

ПЦР – что это такое? Это чувствительный способ определения инфекции. Он распознает ДНК или РНК возбудителя. Для ПЦР материалом для исследования является кал.

Анализ кала на антиген хеликобактер является самым удобным исследованием для пожилых людей, детей и тяжелобольных. В этом случае не требуется присутствия пациента в лаборатории и процедура не связана с травмированием организма. Кстати, о хеликобактер пилори у детей мы расскажем отдельно.

Но обнаружить бактерию в кале не просто. В кишечнике микроорганизм повергается воздействию неблагоприятных условий для него (желчные кислоты, недостаток кислорода). Поэтому активные организмы приспосабливаются к новым условиям, меняют свою форму и их число резко снижается.

Применяется специальный метод полимеразной цепной реакции (пцр), который позволяет определить фрагмент ДНК микроорганизма. Точность результата – 95-96%.

Что нельзя перед сдачей кала

Важно знать, как правильно сдать анализ на хеликобактер. Перед сдачей кала, за 3-4 дня не рекомендуется принимать много пищевых волокон, красящих продуктов, неорганических солей, лекарств, которые усиливают перистальтику кишечника.

Не годится для исследования на хеликобактер кал после клизмы или слабительного.

Анализ кала на хеликобактер пилори проводят до начала лечения. Если до этого пациент принимал антибактериальную терапию по поводу лечения какого-либо заболевания, лучше назначить другой метод обследования.

Расшифровка анализа

Результат анализа на helicobacter pylori бывает положительный и отрицательный. Положительный результат свидетельствует о наличии или перенесенной инфекции. Отрицательные данные — об отсутствии болезни или неправильном проведении исследования.

Цитологический анализ

Цитология есть один из самых точных методов обнаружения хеликобактер пилори в слизистый желудок. При этом методе анализ на хеликобактер пилори практически не дает ложных положительных результатов.

Для исследования берется при фиброгастродуаденоскопии (фгдс) биопсийный материал, мазок – отпечаток слизистой. Результат бывает положительный или отрицательный. По степени обсеменения:

  • слабая – при увеличении в 360 раз в поле зрения обнаруживается до 20 бактерий;
  • умеренная – 20-40;
  • высокая – более 40 бактерий.

Гастроскопия

При помощи фгс (желудочного зонда) при фгдс зрительно проникают в ЖКТ, выбирают самые подозрительные участки для забора слизи из желудка. Затем ее помещают на специальную среду, где определяют уреазную активность микроорганизма. Если индикатор из желтого цвета окрасится в малиновый, это означает, что в материале есть бактерии.

Хеликобактер пилори (Helicobacter pylori) в кале (антигенный тест)

Открытие в 1981 году Helicobacter pylori, изучение его патогенных свойств привело к переосмыслению взглядов на патогенез не только хронического гастрита и язвенной болезни, но и некардиального рака желудка, MALT-лимфомы. По оценке D. Forman до 75% случаев рака желудка в развитых странах связано с H. pylori-инфекцией.

В 1994 г. Международное агентство по изучению рака (IARС) отнесло хеликобактерную инфекцию к канцерогенам первого класса. Кроме того, имеются данные о связи между H. pylori инфекцией и рядом негастродуоденальных заболеваний, в частности железодефицитной анемией, идиопатической тромбоцитопенической пурпурой, а также дефицитом витамина В12.

На сегодняшний день H. pylori-инфекция является одной из наиболее распространенных бактериальных инфекций человека. По данным ряда авторов, около 50% населения земного шара инфицировано этим микроорганизмом. Так в Российской Федерации уровень инфицирования H. pylori взрослого населения составляет более 80%. С момента открытия H.

pylori прошло более 30 лет. За это время разработано большое количество различных лабораторных методов, позволяющих диагностировать хеликобактерную инфекцию. Однако ни один из них не является универсальным. Чувствительность каждого из методов зависит от множества факторов, особенностей течения заболевания, предшествующей терапии.

Все существующие на сегодняшний день методы лабораторной диагностики H. pylori делятся

на инвазивные (ФГДС, исследование биоптатов слизистой) и неинвазивные. Неинвазивные методы, являясь  специфичными и чувствительными, являются первичными и скрининговыми и позволяют диагностировать не только острую, но и латентную форму инфекции.

К неинвазвным скрининговым методам относят:

  • дыхательный тест с мочевиной, меченой 13С – считается эталонным и рекомендован как для первичной диагностики, так и для контроля успешности эрадикации;
  • определение антигена H. pylori в кале;
  • выявление H. pylori в кале методом полимеразной цепной реакции (ПЦР).

Определение антигена H. pylori в кале иммунохроматографическим методом позволяет быстро получить результаты.

Ценность метода определяется его высокой чувствительностью и специфичностью, обеспечивая индикацию антигена даже при наличии малого количества H. pylori.

Методика позволяет проводить мониторинг течения инфекции и оценивать эффективность лечения. Определение антигена H. Pylori возможно и при бессимптомном инфицировании H. pylori.

Показания к назначению:

  • диагностика инфекции, вызванной Helicobacter pylori, обследование пациентов с  гастритом,  язвенной болезнью;
  • мониторинг эффективности лечения пациентов;
  • диагностика рецидивов заболевания;
  • невозможность выполнения инвазивной диагностики в связи с возрастом (дети) или состоянием пациента

Референсные значения: Отрицательный.

«Отрицательный»: в анализируемом образце биологического материала (кала) не выявлен антиген H. pylori, или концентрация его в образце ниже границы чувствительности метода.

«Положительный»: инфицирование H. Pylori — в анализируемом образце биологического материала выявлен  антиген  H. pylori.

Helicobacter pylori — изотопная диагностика | Клиника "Консилиум"

Авторы: Н.В. Бакулина1, В.И. Симаненков1, И.В. Савилова1, А.В. Сварваль2,

1Северо-Западный государственный медицинский университет им. И.И. Мечникова, Санкт-Петербург, 2НИИ эпидемиологии и микробиологии им. Пастера, Санкт-Петербург.

Резюме: В статье представлены результаты исследования частоты встречаемости хеликобактерной инфекции и степени инфицированности пациентов с функциональной диспепсией на основании 13С-уреазного карбамидного дыхательного теста. Обследовано 1929 пациентов.

Показаны высокая степень обсемененности среди больных с функциональной диспепсией при частоте встречаемости Helicobacter pylori (H. pylori) 52%. Описана методика бактериологического тестирования Представлены результаты определения резистентности штаммов H. pylori методом серийных разведений.

Среди анализируемых изолятов, 42,5% резистентны к метронидазолу, 27,1% — к левофлоксацину, 25% — к кларитромицину, 6,3% —  к амоксициллину. Все тестируемые штаммы были чувствительны к тетрациклину.

Ключевые слова: Helicobacter pylori, хеликобактер, H. pylori, 13С-уреазный дыхательный тест, резистентность, кларитромицин, левофлоксацин, антихеликобактерная терапия, эрадикация.

Бакулина Наталья Валерьевна  Д.м.н., профессор

Кафедра терапии и клинической фармакологии ГБОУ ВПО СЗГМУ им. И.И. Мечникова Минздрава России

Симаненков Владимир Ильич  Д.м.н., профессор

Заведующий кафедрой терапии и клинической фармакологии ГБОУ ВПО СЗГМУ им. И.И. Мечникова Минздрава России

Савилова Инна Викторовна

Аспирант кафедры терапии и клинической фармакологии ГБОУ ВПО СЗГМУ им. И.И. Мечникова Минздрава России

Сварваль Алена Владимировна

к.м.н., старший научный сотрудник

ФБУН НИИ эпидемиологии и микробиологии  имени Пастера

Введение

Своевременная диагностика и эрадикация H. pylori, в настоящее время рассматривается, как приоритетная стратегия профилактики развития некардиального рака желудка, снижения риска рецидива язвенной болезни и излечивания от инфекционного хеликобактерного гастрита [1].

  Сложности диагностики микроорганизма в России связаны с малой доступностью в большинстве регионов страны неинвазивных валидизированных высокочувствительных и специфичных методик верификации H. pylori – 13С-уреазного дыхательного теста и определения антигена хеликобактера в стуле моноклональными антителами [2].

  В силу особенностей культивирования H. pylori и сложности определения резистентности к антимикробным препаратам, в большинстве случаев, врачи не обладают информацией о чувствительности микроорганизма к антибиотикам.

Читайте также:  Преждевременное половое развитие у детей: причины, симптомы и методы коррекции

Перечисленные особенности зачастую приводят к гипердиагностике хеликобактерной инфекции, «слепой» (без тестирования на присутствие микроорганизма) эрадикации,  затрудняет назначение адекватной эффективной терапии.

  1. pylori имеет широкий спектр чувствительности к антимикробным препаратам in vitro [3, 4]. Однако, в схемы эрадикации входит ограниченный набор препаратов (кларитромицин, амоксициллин, метронидазол, тетрациклин, левофлоксацин и препараты висмута) [2, 5]. Резистентность H. pylori к антимикробным препаратам является определяющим фактором эффективности существующих режимов эрадикации микроорганизма [5, 6].

Целью данной работы было получение данных о частоте инфицированности пациентов с гастроэнтерологическими жалобами и определении первичной резистентности штаммов H. pylori в Санкт-Петербурге.

Материал и методы исследования.

Проспективное наблюдательное исследование, включившее пациентов, обратившихся к гастроэнтерологу или терапевту с жалобами на диспепсию.

Всем больным выполнен 13С-уреазный дыхательный тест с меченой мочевиной — 13С-карбамидом. Принцип метода основан на высокой уреазно-ферментативной активности  H.

pylori, посредством которой происходит ферментативный гидролиз принятой внутрь меченой мочевины до углекислого газа и аммиака.

Процедура тестирования включала забор проб выдыхаемого воздуха до приема меченого субстрата и через 10, 20 и 30 минут, после приема 13С-карбамида с усилителем уреазной активности хеликобактера – лимонной кислотой.

В природе углерод встречается в виде двух стабильных нерадиоактивных изотопов: «легкого» с массовым числом 12 (12С) и «тяжелого» с массовым числом 13 (13С). Распространенность    12С составляет 98,89%, а 13С – 1,11%.

Природное соотношение углеродов составляет 0,01122.  Изотопной меткой препарата был стабильный нерадиоактивный 13 изотоп углерод.

Доказана прямая корреляция между уреазной активностью хеликобактера и приращением 13С-углерода в выдыхаемом воздухе после приема субстрата [7].

Содержание в выдыхаемом воздухе СО2 и соотношения 13С/12С стабилизированных изотопов определяли с помощью Инфракрасного спектрометра IRIS (Kibion/Wagner, Швеция/Германия).

Кроме того, некоторым пациентам, согласившимся на эзофагогастродуоденоскопию (ЭГДС) и участие в протоколе «WPN-RUS-002 O» было выполнено бактериологическое исследование гастробиоптатов на H. pylori.

Для участия в данном протоколе пациенты давали письменное информированное согласие, одобренное центральным и локальным научным этическим комитетом в соответствии с принципами Хельсинской декларации.

В исследование резистентности  были включены пациенты в возрасте от 18 до 65 лет с подтвержденной инфекцией H. pylori при проведении ЭГДС, подписавшие информированное согласие на участие в исследовании.

Критериям исключения соответствовали пациенты, ранее получавшие антимикробную терапию для эрадикации H. pylori или антибиотики из группы макролидов или получавшие ингибиторы протонной помпы и препараты висмута в течение двух недель, предшествовавших исследованию.

В рамках протокола, во время ЭГДС у всех больных осуществлялся забор гастробиоптатов для микробиологического исследования. Посевы осуществлялись в соответствии с отработанной методикой культивирования [8].

В качестве основы питательной среды для выделения и культивирования H. pylori использовался Колумбийский агар.

Инкубация посевов осуществлялась в микроаэрофильных условиях при содержании кислорода около 5% в анаэростате системы GasPac100 c газогенерирующими пакетами типа GasPak.

Идентификация выделенной культуры проводилась на основании характерной морфологии культуры в мазке, окрашенном по Граму и способности культуры к продукции уреазы.

Антибиотикорезистентность выделенных штаммов H. pylori изучали, используя метод серийных разведений на питательном агаре, содержащем определенные концентрации антибиотика. Определяли чувствительность штаммов H. pylori к кларитромицину, амоксициллину, левофлоксацину, метронидазолу и тетрациклину [9]. Критерии распределения штаммов по степени чувствительности приведены в таблице 1.

Таблица 1 — Минимальные ингибирующие концентрации (МИК) для H. pylori (EUCAST)

МИК (мг/л)
Чувствительные S ≤ Резистентные R >
Амоксициллин 0,12 0,12
Левофлоксацин 1 1
Кларитромицин 0,25 0,5
Тетрациклин 1 1
Метронидазол 8 8

Статистический анализ

Статистический анализ выполнялся с помощью программного пакета IBM® SPSS® Statistics, версия 21.0. Для дихотомических показателей резистентности были представлены 95% доверительные интервалы для долей резистентности к тому или иному антибиотику.

Рзультаты исследования

За 8 месяцев обследовано 1929 пациентов, обратившихся к гастроэнтерологу или терапевту с диспепсическим синдромом. Всем пациентам выполнен четырехточечный 13С-уреазный дыхательный тест. Среди тестируемых пациентов 530 человек прошли курс эрадикации в течение 1-3-х лет до исследования.

Никому ранее уреазный дыхательный тест для контроля уничтожения микроорганизма не выполнялся. Эффективность эрадикационной терапии среди пролеченных лиц составила всего 75%.

Частота встречаемости хеликобактера среди 1399 обследованных пациентов, не лечившихся от хеликобактерной инфекции и предъявлявших жалобы на диспепсию, составила 52% (положительный тест выявлен у 730 больных).  Высокая степень инфицированности выявлена в 80% случаев.

В исследование резистентности было включено 109 инфицированных пациентов от 18 до 64 лет. Бактериологическим методом микроорганизм выделен лишь у 56 пациентов, что составило 51,4% (95% ДИ: 42,0%, 60,8%). Такой низкий процент культивирования микрооргинизма отражает технические трудности, связанные с транспортировкой и культивированием микроаэрофильного микроорганизма.

Чувствительность H. pylori к антимикробным препаратам удалось определить у 48 выделенных штаммов. Из-за скудного роста культуры в 8 случаях оценить антибиотикограмму было невозможно.  Среди анализируемых изолятов H.

pylori штаммов, 17 (42,5%) были резистентны к метронидазолу, 13 (27,1%) — к левофлоксацину, 12 (25%) — к кларитромицину.  Кроме того, было выявлено 3 (6,3%) штамма, устойчивых к амоксициллину. Все тестируемые штаммы были чувствительны к тетрациклину.

В случаях выявления резистентности к трем и более группам антимикробных препаратов, штамм хеликобактера относили к полирезистентным. В ходе исследования 5 (11,1%) микроорганизмов были полирезистентными.

Двойная резистентность к кларитромицину и метронидазолу обнаружена у 2 (4,4%) изолятов, метронидазолу и левофлоксацину — у 4 (8,3%) микроорганизмов. Все штаммы, резистентные к амоксициллину, были устойчивы к кларитромицину.

Частота встречаемости резистентных штаммов отличалась среди мужчин и женщин, однако данный факт сложно интерпретировать из-за малой выборки.

Обсуждение

Существует много методов диагностики хеликобактерной инфекции. Однако, эксперты в качестве приемлемых информативных неинвазивных методик, рассматривают 13С-уреазный дыхательный тест с мочевиной и определение антигена H.

pylori в стуле моноклональными антителами, что отражено в Маастрихтских рекомендациях IV пересмотра [10].

  В нашем исследовании применялся 13С-уреазный мочевинный дыхательный тест, позволивший оценить не только факт наличия инфекции, но и судить о степени инфицированности пациентов на основании динамики приращения меченого 13С в выдыхаемом воздухе [7].

Среди обследованных пациентов с жалобами на функциональную диспепсию, 52% были инфицированы. До начала исследования мы предполагали выявить более высокую частоту встречаемости хеликобактерной инфекции среди пациентов с диспепсическими жалобами.

В данное исследование не включено тестирование здоровых лиц и, следовательно, мы не можем оценить популяционную инфицированность. Но, вероятно, при таком уровне инфицированности пациентов с гастроэнтерологическими жалобами, частота встречаемости инфекции в популяции будет ниже.

Настораживает факт высокой степени инфицированности пациентов — в 80% случаев. При этом, инокулюм-эффект (при высокой концентрации бактерий возбудителя возрастает минимальная ингибирующая концентрация и снижается бактерицидная активность антибиотиков) играет негативную роль, снижая вероятность успешного лечения от инфекции [11]. Кроме того, предпосылкой к снижению эффективности схем эрадикации на основе кларитромицина является выявленный нами высокий уровень резистентности, превышающий 20% порог.

В опубликованных отечественных работах в большинстве случаев выводы  о кларитромицин-резистентности H. pylori сделаны на основании метода ПЦР, тогда как доказана низкая корреляция между фенотипическим и генотипическим методами определения чувствительности H. pylori [12-15].

В нашем исследовании использовался наиболее информативный метод диагностики резистентности H. pylori-инфекции – бактериологический метод серийных разведений.

При применении аналогичной методики тестирования, на основании изучения 133 штаммов, выделенных от пациентов в Смоленске получены данные о низкой резистентности хеликобактера к кларитромицину [16].

В Санкт-Петербурге резистентность к кларитромицину составила 25%, что иллюстрирует межрегиональные различия в частоте назначения антибиотиков и, как следствие, различия в чувствительности микроорганизмов.

Фенотипический метод определения чувствительности к антибиотикам рекомендован Институтом по клиническим и лабораторным стандартам (CLSI), EUCAST, а также Маастрихтским соглашением IV пересмотра в качестве основного метода определения чувствительности H. pylori к кларитромицину [9, 10].

Культуральный метод является высокоспецифичным тестом, однако характеризуется низкой чувствительностью [17, 18]. Даже при четком соблюдении  всех правил транспортировки материала и культивирования, чувствительность в нашем исследовании составила 51,4%.

Объективные сложности работы с культурой микроаэрофильного микроорганизма, объясняют отсутствие широко представленных данных об истинном состоянии антибиотикорезистентности в различных регионах нашей страны.

Выводы

  1. Среди пациентов с функциональной диспепсией инфицированность H. pylori составляет 52%.
  2. Преобладает высокая степень инфицированности H. pylori
  3. Выявлен высокий уровень первичной резистентности к кларитромицину – 25%

и левофлоксацину – 27,1%.

  1. Резистентность к метронидазолу составляет 42,5%.

Экспресс-диагностика Helicobacter pilory

Хеликобактер пилори имеет длину 3,5 мкм. Если выложить друг за другом 300 таких бактерий, то их общая длина будет чуть меньше одного миллиметра. Тело у микроба спиралевидное, гибкое. На одном конце 2-6 жгутиков.

С их помощью хеликобактер быстро передвигается внутри желудка, подыскивает себе удобное место и внедряется, пробуривая отверстие, в слизистой и мышечной ткани.

От разрушительного действия соляной кислоты микроб защищается, выделяя уреазу и другие вещества.

При неблагоприятных условиях (вне организма) бактерия принимает форму шарика (кокка). Её жизнедеятельность замедляется. В таком виде микроб может «спать» длительно — годами. Но как только оказывается в желудке — «просыпается», удлиняется, отращивает жгутики и начинает проявлять патогенную активность.

Как можно заразиться?

По данным статистики, Helicobacter pilory обнаруживается у каждого второго европейца или американца, у семи из десяти азиатов и у девяти из десяти африканцев. Микроб передаётся от человека человеку с немытыми руками, плохо обработанной посудой и столовыми приборами, при поцелуях, пользовании общей зубной щёткой.

Опасность Helicobacter pilory

При активном развитии колоний хеликобактер пилори у человека развиваются признаки гастрита: боли и рези в желудке, тошнота, снижение аппетита.

Микробы продолжают свою патогенную деятельность, внедряясь в мышечный слой желудка, что приводит к образованию язв. Клинические симптомы обостряются.

Присоединяется неприятный запах изо рта, боли в эпигастрии, связанные с приемом пищи, вздутие живота. Человек теряет вес, становится раздражительным.

Но самое опасное: хеликобактер считается ранним маркером возможности развития рака.

Диагностика Хеликобактер пилори

Обнаружить микроб помогает экспресс тест, который проводится во время эндоскопического обследования желудка. Выявив характерные изменения слизистой оболочки пилорической части желудка, доктор берет кусочек тканей (биопсия). Хеликобактер пилори обладает способностью выделять уреазу. Этот фермент разлагает мочевину на аммиак и углекислоту.

Хелпил-тест (быстрый уреазный тест) проводится просто. Биоптат помещают на стандартный одноразовый диск, пропитанный мочевиной и кислотным индикатором. Если в кусочке тканей имеется хеликобактер — мочевина диска под действием ферментов бактерий разлагается и диск окрашивается в синий цвет.

Экспресс-диагностика Helicobacter pilory в Москве

Клиника MAJOR CLINIC оснащена всем необходимым для проведения хелпил-теста во время эндоскопического исследования. Результат известен сразу по окончании гастроскопии (эзофагогастродуоденоскопии).

Записаться на экспресс-диагностику хеликобактер пилори можно по телефону регистратуры и на сайте. Задайте интересующие вопросы доктору на приеме. При обнаружении бактерий, вы получите четкий план лечения с гарантией полного выздоровления.

Не терпите боль в эпигастрии — обследуйтесь и избавьтесь от неё!

Оставьте комментарий

Ваш e-mail не будет опубликован. Обязательные поля помечены *